Tricholomopsis decora (Fr.) Singer, Schweiz. Z. Pilzk. 17: 56 (1939)

 Tricholomopsis decora (Fr.) Singer, Schweiz. Z. Pilzk. 17: 56 (1939)

Ritrovamento effettuato nel Bosco vetusto dell'Aschiero su Faggio a terra in forte decomposizione.
Raccolta studiata da Ubaldo Marulli, sue le foto e l'analisi micro.

Sinonimia:

Agaricus decorus Fr., Syst. mycol. (Lundae) 1: 108 (1821)

Agaricus decorus var. inundatus Fr., Syst. mycol. (Lundae) 1: 108 (1821)

Agaricus rutilans subsp. decorus (Fr.) Romell, in Krok & Almquist, Svensk Flora för skolor, II. Kryptogamer (edn 2) (Stoccolma): 162 (1898)

Clitocybe decora (Fr.) Gillet, Hyménomycètes (Alençon): 171 (1874) [1878]

Cortinellus decorus (Fr.) P. Karst., Bidr. Känn. Finl. Nat. Folk 32: 25 (1879)

Dendrosarcus decorus (Fr.) Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 3(3): 463 (1898)

Gyrophila decora (Fr.) Quél., Enchir. fung. (Paris): 10 (1886)

Pleurotus decorus (Fr.) Sacc., Syll. fung. (Abellini) 5: 342 (1887)

Tricholoma decorum ( Fr.) Quél., C. r. Assoc. Franç. Avancem. Sci. 11: 389 (1883) [1882]

Tricholoma rutilans subsp. decorum (Fr.) Romell, in Krok & Almquist, Svensk Flora för skolor, II. Kryptogamer (edn 2) (Stoccolma): 208 (1932)

Tricholoma rutilans var. decorum (Fr.) L. Maire, Étude synth. genre Tricholoma: 107 (1916)

Tricholomopsis decora f. longispora A.N. Petrov, Mikol. Fitopatolo. 17(1): 44 (1983)

Campioni raccolti dall'amico Bruno de Ruvo su tronco di legno molto degradato in località Prati di Tivo, il 07.09.2024.

Microscopia : spore ellittiche, JKJ neg., monoguttulate, ingialliscono se trattate con NH4OH conc.,(5.😎 6.3 - 8.1 (8.5) × (3.6) 3.8 - 4.3 µm

Q = (1.5) 1.54 - 2 ; N = 31

Me = 7.3 × 4.1 µm ; Qe = 1.8

basidi tetrasporici 21.3 - 24.06 × 5.4 - 6.3 µm., cheilocistidi ventricosi, abbondanti, 20.82 - 25.6 × 6.8 - 10.4 µm., assenza di pleurocistidi e  caulocistidi, presenti giunti a fibbia.

Neonectria coccinea (Pers.) Rossman & Samuels, in Rossman, Samuels, Rogerson & Lowen, Stud. Mycol. 42: 158 (1999)

 Neonectria coccinea (Pers.) Rossman & Samuels, in Rossman, Samuels, Rogerson & Lowen, Stud. Mycol. 42: 158 (1999)

fungo molto interessante per il complesso iter di diffusione.
Un emittero perforando la corteccia dei Faggi, Fagus sylvatica, agevoli la diffusione di questo fungo capace di produrre carie bianche e portare a morte l'albero. 
Da noi non abbiamo una sua grande diffusione ma nel continente Nord Americano ha causato vere e proprie epidemie nei faggi.
Tutto questo dimostra come siamo profondamente interconnessi.

Lo studio micro e l'analisi sono di Ubaldo Marulli.

Sinonimia:

Chitinonectria coccinea (Pers.) M. Morelet, Ann. Soc. Sci. Nat. Arch. Toulon et du Var 178: 6 (1968)

Creonectria coccinea (Pers.) Seaver, Mycologia 1(5): 188 (1909)

Cucurbitaria coccinea (Pers.) Gray, Nat. Arr. Brit. Pl. (London) 1: 519 (1821)

Cucurbitaria mori Kuntze, Revis. gen. pl. (Leipzig) 3(3): 460 (1898)

Ephedrosphaera coccinea (Pers.) Dumort., Comment. bot. (Tournay): 90 (1822)

Nectria coccinea (Pers.) Fr., Summa veg. Scand., Sectio Post. (Stockholm): 388 (1849)

Nectria coccinea var. caespitulosa Sacc., Syll. fung. (Abellini) 2

longiconia Wollenw., Z. ParasitKde 1: 159 (1928)

Nectria coccinea var. minor Wollenw., Z. ParasitKde 1: 157 (1928)

Nectria coccinea var. platyspora Rehm, Annls mycol. 7(2): 137 (1909)

Nectria coccinea var. ruberrima Sacc., Syll. fung. (Abellini) 2: 482 (1883)

Nectria coccinea var. rubroaurantiaca Sacc., Syll. fung. (Abellini) 2: 482 (1883)

Nectria coccinea var. sanguinella Wollenw., Angew. Robot. 8: 190 (1926)

Nectria coccinea var. sordidula Sacc., Atti Mem. R. Accad. Sci., Lett., Arti, Padova 33: 190 (1917)

Nectria coccinea var. subsparsa Sacc., Syll. fung. (Abellini) 2: 482 (1883)

Nectria coccinea var. tropica Wollenw., Angew. Robot. 8: 191 (1926)

Nectria platyspora (Rehm) Weese, in Höhnel & Weese, Annls mycol. 8(4): 465 (1910)

Nectria tropica (Wollenw.) Toro, Fitopatologia 19: 970 (1929)

Sphaeria coccinea Pers., Icon. Desc. Fung. Min. Cognit. (Lipsia) 2: 47 (1800)

Sphaeria mori With., Arr. Brit. pl., Edn 3 (London) 4: 391 (1796)

Stigmatisphaera coccinea (Pers.) Dumort., Comment. bot. (Tournay): 89 (1822)

Raccolta efettuata dall'amico Bruno de Ruvo nella faggeta vetusta dell'Aschiero, Prati di Tivo (TE), il07.09 2024, foto n°2143.

Questi ascomiceti purtroppo causano il cancro della corteccia dei faggi . L’attacco  patologico inizia a causa di una cocciniglia , la Cryptococcus fagisuga Lind , che per trarre nutrimento dalla corteccia la lesionano aprendo così la via all’infezione fungina.

 Aggiungo dati microscopici:

Aschi JKJ neg., cilindrici spesso con un anello apicale all'apice, monotunicati con membrana sottilissima difficile da vedere anche dopo colorazioni istochimiche, 51.13 - 61.4 × 5.6 - 7.2 µm., 8-sporici, ascospore monosettate da ellissoidali a fusiformi con estremità strettamente arrotondate, a volte obliquamente biseriate vicino all'apice, ialine.(10.3) 10.7 - 12.1 (12.6) × (4.2) 4.6 - 5.3 (5.5) µm

Q = (2) 2.1 - 2.5 (2.7) ; N = 30

Me = 11.3 × 4.9 µm ; Qe = 2.3

Chrysomphalina grossula (Pers.) Norvell, Redhead & Ammirati, Mycotaxon 50: 380 (1994)

 Chrysomphalina grossula (Pers.) Norvell, Redhead & Ammirati, Mycotaxon 50: 380 (1994)

ottimo ritrovamento di una specie rara e superlativa la determinazione da parte di Ubaldo Marulli, sue le foto e l'analisi micro.

Sinonimia:

Agaricus grossulus Pers., Mycol. eur. (Erlanga) 3: 110 (1828)

Agaricus umbellifer var. abiegnus Berk. & Broome, Ann. Mag. nat. Hist., Ser. 4 15(no. 85): 28 (1875)

Camarophyllus grossulus (Pers.) Clémençon, Beih. Z. Mykol. 4: 55 (1982)

Chrysomphalina grossula var. belleri (Bon) P.-A. Moreau & Courtec., Docums Mycol. 34(nn. 135-136): 49 (2008)

Cuphophyllus grossulus (Pers.) Bon, Docums Mycol. 14(n. 56): 12 (1985) [1984]

Cuphophyllus grossulus var. 19(n. 76): 73 (1989)

Gerronema grossulum (Pers.) Singer, Beih. Sydowia 7: 14 (1973)

Hygrocybe grossula (Pers.) Pätzold & Laux, 1 mal 1 des Pilzesammelns: [1] (2013)

Hygrophorus wynneae Berk. & Broome, Ann. Mag. nat. Hist., Ser. 5 3(no. 15): 208 (1879)

Omphalia abiegna (Berk. & Broome) J.E. Lange, Dansk bot. Ark. 6(n. 5): 13 (1930)

Omphalia bibula (Quél.) (Abellini) 5: 324 (1887)

Omphalia bibula f. citricolor (Rolland) Konrad & Maublanc, Icon. Selezionare. Fung.: 288 (1934)

Omphalia bibula var. citricolor Rolland, Boll. Soc. mycol. Fr. 7: 94 (1891)

Omphalia grossula (Pers.) Cetto, Funghi dal vero: pl. 1118 (1973)

Omphalia wynneae (Berk. & Broome) Quél., C. r. Assoc. Franç. Avancem. Sci. 11: 390 (1883) [1882]

Omphalina abiegna (Berk. & Broome) Singer, Lilloa 22: 212 (1951) [1949]

Omphalina bibula Quél., Enchir. fung. (Paris): 44 (1886)

Omphalina bibula var. citricolor Rolland, Boll. Soc. mycol. Fr. 7(2): 94 (1891)

Omphalina grossula (Pers. ) Singer, Persoonia 2(1): 29 (1961)

Omphalina wynneae (Berk. & Broome) S. Ito [come 'wynniae'], Mycol. Fl. Japan 5(2): 128 (1959)

Basidiomi raccolti dall'amico Bruno de Ruvo su ceppaia degradata in località Prati di Tivo il 7.9.24. Foto n° 2115.

Una giornata intera per arrivare alla determinazione di questi belli e rari carpofori, tanto che in alcune nazioni sono inseriti nella lista rossa. 

Microscopicamente si osservano spore ellissoidali con un robusto apicolo, liscie, ialine, guttulate JKJ neg., (8.2) 8.25 - 9.6 (9.9) × (4.2) 4.6 - 5.1 (5.9) µm

Q = (1.6) 1.63 - 2 (2.1) ; N = 18

Me = 9 × 4.9 µm ; Qe = 1.8

basidi tetrasporici 39.1 - 43.1 × 5.6 - 7.3 µm. con gaf basale, assenza di cheilocistidi, trama della pileipellis formata da ife parallele,più o meno aggrovigliate e con setti semplici.

 

Phaeohelotium lilacinum (Bres.) Dennis, Ascomiceti britannici: 118 (1968)

Phaeohelotium lilacinum (Bres.) Dennis, Ascomiceti britannici: 118 (1968) 

deterninazione a cura dell'mico Ubaldo Marulli, sue le foto e l'analisi micro

Cenangium lilacinum (Bres.) Rehm, Rabenh. Krypt.-Fl., Edn 2 (Leipzig) 1.3(lief. 55): 1255 (1896)

Dermatea lilacina (Bres.) Rehm, Rabenh. Krypt.-Fl., Edn 2 (Leipzig) 1.3(lief. 55): 1255 (1896)

Pachydisca lilacina (Bres.) Boud., Hist. Class. Discom. Eur. (Paris): 95 (1907)

Pezicula lilacina Bres., Fung. trident. 1(4-5): 68 (1884)

Raccolta su ramo di leccio fatta dall'amico Bruno de Ruvo in località Poggio Umbricchio (TE) l'11.12.24, foto n°3753.

Spore ellissoidali senza setti, pluriguttulate, (16) 16.3 - 20.9 (21) × (5.9) 6.1 - 7.4 (7.7) µm

Q = (2.5) 2.6 - 3.2 (3.3) ; N = 18

Me = 19 × 6.8 µm ; Qe = 2.8

Aschi amiloidi ottosporici 115.1 - 119.3 × 6.7 - 8 µm., parafisi cilindracee con setti.

Mycena capillaris (Schumach.) P. Kumm. Fuhr. Pilzk. (Zwickau): 108 (1871)

 Mycena capillaris (Schumach.) P. Kumm. Fuhr. Pilzk. (Zwickau): 108 (1871)

raccolta studiata dall'amico Rossano Giolo sue le foto micro.
Descrizione dal sito The Mycenas oh Northen Europe.

Gregario e molto comune sulle foglie cadute e in decomposizione di Fagus . Registrato anche su altri tipi di foglie, tra cui Quercus e Salix (Aronsen & Læssøe 2016). Si verifica nel tardo autunno. Comune con Fagus nella parte meridionale della Norvegia.

Pileo di 1-3 mm di diametro, emisferico, parabolico, conico-convesso, spesso leggermente depresso al centro, pruinoso, glabrescente, solcato, traslucido-striato, da grigio biancastro a grigio pallido o bianco, a volte con centro più scuro. Lamelle 6-10 che raggiungono il gambo, ascendenti, da molto strette a abbastanza larghe, il bordo prima concavo poi convesso, strettamente adnato ad adnato, a volte formando uno pseudocollario, da grigio biancastro a bianco, il bordo bianco. Gambo 20-40 x 0,25-0,5 mm, filiforme, flessuoso, cartilagineo (?), pruinoso, glabrescente eccetto per la base solitamente puberula, lucido, quando molto giovane completamente nerastro o grigio scuro o nerastro o grigio scuro all'apice, diventando grigio o grigio-marrone, infine bianco acquoso, la base +/- un po' bulbosa, attaccata al substrato da una chiazza di fibrille raggiate, da marrone scuro a nerastre, non facilmente visibili e spesso apparentemente insidiose. Odore nullo. Sapore non registrato.

Basidi 17-21 x 6-8,5 μm, clavati, 4-spore (raramente 2-spore). Spore 8,5-11,5(-13,5) x 2,8-4,5 μm, allungate, cilindriche (più cilindriche nella forma 2-spore), amiloidi. Cheilocistidi 14-26 x 7-15 μm, che formano una banda sterile, clavati o obpiriformi, ricoperti da escrescenze o verruche semplici, cilindriche, dritte e uniformemente distanziate 2-4,5 x 0,5-1 μm. Pleurocistidi assenti. Trama lamellare destrinoide. Ife della pileipellis larghe 4-15 μm, densamente ricoperte da verruche o corte escrescenze cilindriche. Ife dello strato corticale del gambo larghe 2,5-3,5 μm, densamente ricoperte da corte escrescenze cilindriche lunghe 1-2 μm. Caulocistidi alla base del gambo larghi 5-15 μm, clavati, obpiriformi o sferopeduncolati, densamente ricoperti da corte escrescenze cilindriche. Morsetti abbondanti nella forma a 4 spore, assenti nella forma a 2 spore.

Mycena capillaris è un membro della sez. Polyadelphia . È caratterizzato dalle piccole dimensioni, dal pileo bianco-grigiastro, dalle lamelle distanti, dal gambo scuro (almeno negli esemplari più giovani), dai cheilocistidi e dalle ife della pileipellis ricoperti di verruche o corte escrescenze cilindriche e dalla presenza sulle foglie di Fagus. È simile a M. polyadelpha , ma differisce in diverse caratteristiche come il colore del pileo e del gambo, l'attaccatura delle lamelle e la larghezza delle spore. Quest'ultima cresce sulle foglie di Quercus , ma è stata registrata anche sulle foglie di Fagus . Se queste registrazioni rappresentino realmente M. polyadelpha , dovrebbe essere indagato con metodi molecolari. Ciò vale anche per le registrazioni di M. capillaris sulle foglie di Quercus e Salix .

Secondo Kühner (1938: 250) la base dello stipite è "naissant d'une petite tache brune ou noire, à peine nette à l'œl nu, formée de fibrilles noires rayonnantes, étroitement apprimées sur le support". Maas Geesteranus (1986: 163) ha descritto lo stipite come "originato da un piccolo verticillo di ife miceliari raggianti, molto fini, marrone scuro (talvolta subepidermiche e non facilmente distinguibili)". Nella mia esperienza queste fibrille non sono facili da vedere e molto spesso sembrano essere assenti. Di conseguenza questo è del tutto inutile come carattere identificativo.